Possibilities of the Alternative Management of Mollusk Pests in Agricultural Crops. A Review.

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.17981/ingecuc.18.1.2022.01

Palabras clave:

control biológico, extractos vegetales, caracoles, babosas, insectos, nemátodos, barreras

Resumen

Introducción: Los moluscos constituyen importantes plagas de los cultivos agrícolas, para las cuales se emplean en muchos casos mosquicidas químicos que contaminan el medio ambiente y las cosechas.

Objetivo: Valorar información actualizada sobre las alternativas para el manejo de especies de moluscos plagas en cultivos agrícolas en Colombia y en el mundo.

Metodología: Se realizó una investigación documental descriptiva donde las unidades de análisis fueron los artículos recopilados en una búsqueda bibliográfica sobre información relacionada con las especies de moluscos plagas y los métodos de control alternativo durante el periodo de 2010 a 2021

Resultados: De la última década se consiguieron artículos sobre alternativas para el control de moluscos plagas en todos los continentes. De Colombia solo 7 artículos, de los cuales 3 corresponden al empleo de tierra de diatomeas, 3 a extractos de vegetales y 1 a manejo agroecológico, mientras que, a nivel internacional de los 54 artículos localizados, 21 estuvieron relacionados a los extractos vegetales, 17 a control biológico, 6 de aceites esenciales, 5 con barreras, 3 con manejo agroecológico y 2 con bioplaguicidas.

Conclusiones: Predominaron las alternativas con el empleo de extractos vegetales, seguidas por los medios biológicos como insectos, nematodos, microorganismos y otros, productos naturales como la cal y la tierra de diatomeas, así como diferentes materiales como repelentes o barreras, dependiendo el tipo de alternativa recomendada en gran medida, de la especie de molusco y su tamaño, de los recursos fitogenéticos presentes y de los biooreguladores reportados, lo cual debe tenerse en cuenta en Colombia.

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Citas

E. Carrillo, D. Jiménez, Á. Aller, A. Borges, A. El bisulfito de sodio de menadiona (MSB) mejora la respuesta de resistencia del tomate, lo que lleva a repeler las plagas de moluscos. Ciencia del manejo de plagas, 2016; 72 (5), p. 950-960. DOI: 10.1002/ps.4074

. M. Nodarse, E. Becerra, E. Evaluación del consumo de hoja de Lactuca Sativa L. y Spinacia oleracea L. por especies de moluscos in vitro. Revista Metropolitana de Ciencias Aplicadas, 2021; 4 (1), p. 74-78. http://remca.umet.edu.ec/index.php/REMCA/article/view/413

. M. Matamoros. Los moluscos fitófagos en la agricultura cubana. Agricultura Orgánica. 20 (2), pp. 9 -13. 2014. https://www.researchgate.net/publication/287815497

. Parra, F. Estrategia de divulgación científica sobre el control de una especie invasora: el caracol gigante africano. (Tesis de maestría). 2019. UNAL. Bogotá. Colombia. https://repositorio.unal.edu.co/handle/unal/76500

. G. Aguilera, J. Ortiz. Distribución geográfica del caracol gigante africano en predios agrícolas del Valle del Cauca, Colombia. Revista Centro Agrícola. 2020; 4 (1), p. 5-12. http://cagricola.uclv.edu.cu/index.php/es/

. M. Díaz. Informe especial: Caracol gigante africano. ICA Comunica. 2013 https://www.ica.gov.co/periodico-virtual/prensa

. A. López, O, Montenegro, L. Liévano. Invasión del caracol gigante africano en Colombia. Retratos de la biodiversidad. Bogotá: Universidad Nacional de Colombia. ABC de la biodiversidad. 2014. 28. https://repositorio.unal.edu.co

. M. Lugones, M. Ramírez. Daños a la agricultura, el medio ambiente y la salud ocasionados por el caracol gigante africano. Revista Cubana de Higiene y Epidemiología. 2016; 54 (2), p. 53-61. http://www.revepidemiologia.sld.cu/index.php/hie/article/view/34/182

. C. Fontanilla, C. Wade. Research Note: First report of Angiostrongylus cantonensis in the giant african land snail Achatina fulica in French Polynesia detected using the SSU rRNA gene. Tropical biomedicine, 2012; 29 (4), p. 642-645. http://citeseerx.ist.psu.edu/

. D. Córdoba, A. Patiño, A. Giraldo. (2017). Prevalencia de parásitos nematodos Strongylidos asociados al caracol africano, Achatina fulica, en el Valle del Cauca, Colombia. Revista MVZ Córdoba; 2017, 22 (3), p.6276-6286 https://doi.org/10.5007/2175-7925.2013v26n1p189

. M. Montoya, F. Restrepo, N. Moreno, P. Mejía. Impacto del manejo de agroquímicos, parte alta de la microcuenca Chorro Hondo, Marinilla. Revista Facultad Nacional de Salud Pública. 2014; 32 (2), p. 26-35. https://revistas.udea.edu.co/index.php/fnsp/article/view/14094

. L. Klein, G. Chastain, J. Garbacik, L. Qian, J. Mc Donnell. Acute toxicity of essential oils to the pest slug Deroceras reticulatum in laboratory and greenhouse bioassays. Journal of Pest Science. 2020; 93 (1), p. 415-425, DOI: https://doi.org/10.1007/s10340-019-01154-0

. A. Al-Sarar, H. Hussein, Y. Abobakr, A. Bayoumi. Molluscicidal activity of methomyl and cardenolide extracts from Calotropis procera and Adenium arabicum against the land snail Monacha cantiana. Molecules. 2012; 17 (5), p. 5310-5318.

. E. Durço, T., Vargas, L. Silva. Conhecimento popular: impactos e métodos de controle de Achatina fulica em Valença–RJ, Brasil. Biotemas, 2013; 26 (1), p. 189-196. DOI: https://doi.org/10.5007/2175-7925.2013v26n1p189

. A. Pereira, R. França, D. Oliveira, D. Mendes, R. Gonçalves, G. Rosa. Evaluation of the molluscicidal potential of hydroalcoholic extracts of Jatropha gossypiifolia Linnaeus, 1753 ON Biomphalaria glabrata (Say, 1818). Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo. 2014; 56 (6), p. 505-510, DOI: https://doi.org/10.1590/S0036-46652014000600009

. C. Andrade, P. Silva, R. Pinto, P. Coelho, M. Romano, K. Faria de Alvarenga, E. Oliveira. Development of a natural molluscicide prototype kit (MoluSchall) for the control of Schistosomiasis mansoni transmission. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical. 2019; 52, DOI: https://doi.org/10.1590/0037-8682-0252-2019

. J. Renkema, G. Cutler, D. Blanchard, A. Hammermeister. Using ground beetles (Coleoptera: Carabidae) to control slugs (Gastropoda: Pulmonata) in salad greens in the laboratory and greenhouse. The Canadian Entomologist. 2014; 146 (5), p. 567-578. DOI: https://doi.org/10.4039/tce.2014.8

. D. González, R. San Martín. Molluscicidal effects of saponin-rich plant extracts on the grey field slug. International Journal of Agriculture and Natural Resources. 2013; 40 (2), p. 341-349. http://www.ijanr.cl/index.php/ijanr/article/view/1102

. K. Jeong, S. Lee, K. Hong, C. Shin, G. Yun. Effective control of slug damage through tobacco extract and caffeine solution in combination with alcohol. Horticulture, Environment, and Biotechnology. 2012; 53 (2), p. 123-128.

. D. Grubišić, T. Gotlin, A. Mešić, I. Juran, A. Loparić, D. Starčević, T. Benković. Slug control in leafy vegetable using nematode Phasmarhabditis hermaphrodita (Schneider). Applied Ecology and Environmental Research. 2018; 16, p. 1739-1747. DOI: http://dx.doi.org/10.15666/aeer/1602_17391747

. M. Matamoros. Manejo Agroecológico de Moluscos. En: Vázquez, L., Manual para la adopción del manejo agroecológico de plagas en fincas de la agricultura suburbana. 2011. CIDISAV. p. 226-229. https://www.researchgate.net/publication/274252975

. C. Martín, Y., Pérez, L. Castellanos, B. Soto. Efectividad de extractos vegetales para el control de Praticolella griseola (Pfeiffer) (Gastropoda: Polygyridae). Revista Centro Agrícola, 2017; 44 (2), p. 68-74. http://cagricola.uclv.edu.cu

. M. Nodarse, L. Castellanos, N. Herrera, M. Morfa. Acción molusquicida de extractos vegetales de tres especies de la familia Agavaceae contra Praticolella griseola (Pfeiffer). Revista de Protección Vegetal, 2017; 32 (2). http://revistas.censa.edu.cu/index.php/RPV/article/view/880

. J. Reyes, D. Aponte, D. Sariol, E. Enrique, C. Bermeo, L. Llenera. Evaluación de Agdestis clematidea en el control de Subulina octona en lechuga. Centro Agrícola. 2019; 46 (3), p. 5-15. http://cagricola.uclv.edu.cu/descargas/pdf/V46-Numero_3/cag01319.pdf

. A. Cóndor. Biological control of slugs with the rhabditid nematode Phasmarhabditis hermaphrodita. Revista Ecuatoriana de Medicina & Ciencias Biologicas, 2020; 41 (1), DOI: https://doi.org/10.26807/remcb.v41i1.836

. M. Saad. Chemical composition and biological activities of four citrus essential oils. Journal of Plant Protection and Patholog. 2013; 4 (9), p. 767-780, DOI: https://doi.org/10.21608/jppp.2013.87481

. M. Azzam, M. Tawfik, M. Effect of Some Rotifers on Terrestrial Snails and Slugs. Egyptian Journal of Biological Pest Control. 2015; 25 (3), p. 581-586. https://n9.cl/ejbpc

. O. Mustafa. Toxicity of thymol on the ultra-scanning structure of skin and digestive gland proteins of the two slugs ‘Limax maximus and Lehmannia marginata’. The Egyptian Journal of Hospital Medicine. 2018; 71 (6), p. 3405-3415. DOI: https://journals.ekb.eg/article_8571.html

. O. Mustafa. Effects of a plant product (Thymol) on the salivary gland of the giant slug Limax maximus in Egypt (Histological and Ultrastructural study). Egyptian Journal of Aquatic Biology and Fisheries. 2018; 22 (3), pp. 55-69. https://journals.ekb.eg/article_8768.html

. N. Mahmoud, A. Ibrahim, M. Willson, M. Hussein, S. Moussa. Molecular identification of parasitic nematode and its pathogenicity against three species of land gastropods. Research on Crops. 2019; 20, DOI: https://doi.org/10.31830/2348-7542.2019.139

. M. Abd El-Atti, A. Khalil, A. Elsheakh, W. Elgohary. Biological control of Monacha cartusiana “glassy clover land snails” by microbial biopesticides Biozed and Biogard, using bait technique. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology. 2020; 25, DOI: https://doi.org/10.1016/j.bcab.2020.101572

. A. Alzabib, Y. Abobakr, A. Al‐Sarar, I. Hussein, A. Basudan, A. El‐Gamal, H. El_Komy. Molluscicidal activity of cardiac glycosides isolated from Adenium obesum. Pest management science. 2019; 75 (10), pp. 2770-2775, DOI: https://doi.org/10.1002/ps.5388

. M. Azzam, N. El-Abd, N. First record of Phasmarhabditis sp. from eggs of Eobania vermiculata (Müller) snails in Egypt and their response to host size. Egyptian Journal of Biological Pest Control. 2021; 31 (1), p. 1-7, DOI: 10.1186/s41938-021-00389-3

. N. Mahmoud, N. El-Abd, N. Potential of Megaselia scalaris (Diptera: Phoridae), as biocontrol agent of Eobania vermiculata under semi field conditions. Egyptian Journal of Plant Protection Research Institute, 2021; 4 (1). www.ejppri.eg.net

. Ž. Laznik, S. Trdan, S. Is a combination of different natural substances suitable for slug (Arion spp.) control?. Spanish journal of agricultural research. 2016; 14 (3). pdfs.semanticscholar.org/8bd6/047c4b55e3c7e54a90bec83688749b62cc47.pdf

. Ž. Laznik, T. Bohinc, K., Franin, I., Majić, S., y Trdan. Efficacy of invasive alien plants in controlling Arionidae slugs. Spanish journal of agricultural research. 2020; 18 (1), e1001. DOI: 10.5424/sjar/2020181-15542

. I. Tandingan, D. McDonnell, S. Lopez, D. Paine, P. De Ley. Phasmarhabditis hermaphrodita (Nematoda: Rhabditidae), a potential biocontrol agent isolated for the first time from invasive slugs in North America. Nematology. 2014; 16 (10), p. 1129-1138. DOI: https://doi.org/10.1163/15685411-00002838

. R. Donnell, J. Yoo, K. Patel, L. Rios, R. Hollingsworth, J. Millar, T, Paine. (2015). Can essential oils be used as novel drench treatments for the eggs and juveniles of the pest snail Cornu aspersum in potted plants?. Journal of pest science. 2015; 89 (2), p. 549-555, DOI: https://doi.org/10.1007/s10340-015-0690-y

. J. Capinera. Assessment of Barrier Materials to Protect Plants from Florida Leatherleaf Slug (Mollusca: Gastropoda: Veronicellidae). Florida Entomologist. 2018; 101 (3), DOI: https://doi.org/10.1653/024.101.0327

. J. Mc Donnell, S. Lutz, K. Howe, R. Denver, R. First report of the gastropod-killing nematode, Phasmarhabditis hermaphrodita, in Oregon, U.S.A. Journal of nematology. 2018; 50 (1), p. 77, DOI: https://doi.org/10.21307/jofnem-2018-014

. R. Donnell, A., Colton, D., Howe, D. Denver. Lethality of four species of Phasmarhabditis (Nematoda: Rhabditidae) to the invasive slug, Deroceras reticulatum (Gastropoda: Agriolimacidae) in laboratory infectivity trials. Biological control. 2020; 150, 104349, DOI: https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2020.104349

. I. Tandingan, J. Schurkman, C. Wilen, R. Dillman, R. Mortality of the invasive white garden snail Theba pisana exposed to three US isolates of Phasmarhabditis spp (P. hermaphrodita, P. californica, and P. papillosa). PLOS ONE. 2020; 15 (1), DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0228244

. J. Edis, S. Basay, T. Lindzie, R. Alegado, A. Alicante, M, Alon, P. Picardal, P. In vitro evaluation of the molluscicidal activity of Euphorbia tirucalli latex extract against the mollusk rice pest Pomacea canaliculata (Caenogastropoda: Ampullariidae). Biodiversity and Environmental Sciences. 2018;13 (2). p. 237-245. Recuperado de https://www.researchgate.net/publication/327388247

. S. Das, A. Dolai. A successful “Mobile slug and snail control device” by physical method: an innovative idea and its application. International Journal of Agricultural Science and Research (IJASR). 2015; 5 (6), p. 25-30, Paper ID: IJASRDEC201054. http://www.tjprc.org/

. V. Selvi, L. Ram, R. Masto. Molluscicidal effect of biogenic silica and botanical pesticides for the control of Achatina fulica (giant African land snail) and Laevicaulis alte (garden slug). Journal of Phytopathology and Pest Management. 2015; 2 (1), pp. 12-21. http://ppmj.net/

. K. Srivastava, K. Singh, K. Biological action of essential oils (terpenes). International Journal of Biological and Medical Research. 2019; 10 (3), p. 6854-6859. https://www.biomedscidirect.com/2537/biological_action_of_essential_oils_terpenes/search

. S. Kashyap, S. Khagta, K. Guleria, V. Arya. Plants as Molluscicides: A recent update. International Journal of Botany Studies. 2019; 4 (1), pp. 50-56. www.botanyjournals.com

. Kumar, P. Molluscicidal efficacy of medicinal plant solanum surattense against Fasciola vector snail, Lymnaea acuminata. International Journal of Biological Innovations. 2021; 3 (1), pp. 1020-126, DOI: https://doi.org/10.46505/IJBI.2021.3110

. K. Ahmed, C. Stephens, A. Bistline-East, D. Williams, R. Mc Donnell, M., Carnaghi, M. Gormally. Biological control of pestiferous slugs using Tetanocera elata (Fabricius) (Diptera: Sciomyzidae): larval behavior and feeding on slugs exposed to Phasmarhabditis hermaphrodita (Schneider, 1859). Biological Control. 2019. 135, pp. 1-8, DOI: https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2019.04.003

. J. Watz, D. Nyqvist. Artificial barriers against arionid slug movement. Crop Protection. 2020; 142, DOI: https://doi.org/10.1016/j.cropro.2020.105525

. Y. Morii, T. Nakano, T. Citizen science reveals the present range and a potential native predator of the invasive slug Limax maximus Linnæus, 1758 in Hokkaido Japan. Bioinvasions Records. 2017; 6 (3), p. 181-186, DOI: https://doi.org/10.3391/bir.2017.6.3.01

. M. Adomaitis, G. Skujienė. Lethal Doses of Saponins from Quillaja saponaria for Invasive Slug Arion vulgaris and Non-Target Organism Enchytraeus albidus (Olygochaeta: Enchytraeidae). Insects. 2020; 11 (11), 738, DOI: https://doi.org/10.3390/insects11110738

. A. Harmouzi, A. Boughdad, A. El, A. Chaouch. Toxicity of Euphorbia helioscopia pellets to two phytophagous molluscs, Theba pisana Müller, 1774 (Pulmonata: Helicidae) and Arion hortensis Férussac, 1819 (Pulmonata: Arionidae). Pesticidi i fitomedicina, 2018; 33 (3-4), p. 241-252, DOI: https://doi.org/10.2298/PIF1804241H

. F. Louanjli, B. Bahlaouan, A. Fathi, F. Ozi, M. Hadidi, S. Assaba, N. Boutaleb. Conception by a Process for Extruding Plastic Mulching Film with Cade Oil and Study of Snail Repellent and Anti-bacterial Adhesion Effects. Journal of Agricultural Science and Technology. 2020; 10, DOI: https://doi.org/10.17265/2161-6264/2020.05.001

. O. Adetunji, O. Salawu. Efficacy of ethanolic leaf extracts of Carica papaya and Terminalia catappa as molluscicides against the snail intermediate hosts of schistosomiasis. Journal of medicinal plants Research. 2010; 4 (22), p. 2348-2352, DOI: https://doi.org/10.5897/JMPR10.468

. B. Otarigho, O. Morenikeji. Molluscicidal effects of aqueous and ethanolic extracts of Lemongrass (Cymbopogon citratus) leaf against the different developmental stages of Biomphalaria pfeifferi. New York Science Journal. 2012; 5 (8), pp. 70-77. http://www.sciencepub.net/newyork

. A. Lanuza, A. Santos, E., Barría, G. Hernández, M. Osorio. Depredación de la “babosa” Veronicella cubensis Pfeiffer (Mollusca: Gastropoda: Veronicellidae), por la larva de Cratomorphus signativentris Olivier 1895 (Coleoptera: Lampyridae) en Panamá. Tecnociencia. 2021; 23 (1), p. 229-350. https://revistasvip.up.ac.pa/index.php/tecnociencias/article/view/1036

. M. Douglas, J. Tooker, J. Slug (Mollusca: Agriolimacidae, Arionidae) ecology and management in no-till field crops, with an emphasis on the mid-Atlantic Region. Journal of Integrated Pest Management. 2012; 3 (1), p. 1-9, DOI: http://dx.doi.org/10.1603/IPM11023

. M. Sousa, J., Rosa, J., Cunha, M. Fernandes. Molluscicidal activity of four Apiaceae essential oils against the freshwater snail Radix peregra. Journal of Pest Science. 2017; 90 (3), pp. 971-984, DOI: https://doi.org/10.1007/s10340-017-0842-3

. A. Pieterse, A., Malan, J. Ross. Nematodes that associate with terrestrial molluscs as definitive hosts, including Phasmarhabditis hermaphrodita (Rhabditida: Rhabditidae) and its development as a biological molluscicide. Journal of helminthology. 20117; 91 (5), DOI: https://doi.org/10.1017/S0022149X16000572

. S. Khoja, K. Eltayef, I. Baxter, J. Bull, E. Loveridge, T. Butt. Fungal volatile organic compounds show promise as potent molluscicides. Pest management sciences. 2019; 75 (12), p. 3392-3404, DOI: https://doi.org/10.1002/ps.5578

. J. Cutler, R. Rae. Pathogenicity of wild and commercial Phasmarhabditis hermaphrodita exposed to the pestiferous slug Deroceras invadens. Journal of invertebrate pathology. 2020; 174, p. 107435, DOI: https://doi.org/10.1016/j.jip.2020.107435

. J. Nermuť, V. Půža, Z. Mráček. Bionomics of the slug-parasitic nematode Alloionema appendiculatum and its effect on the invasive pest slug Arion vulgaris. BioControl. 2019; 64 (6), pp. 697-707, DOI: https://doi.org/10.1007/s10526-019-09967-9

. S. Laymanivong, R. Aukkanimart, T. Boonmars, V. Vanisaveth, P. Senephansiri. Histopathological effects of Camellia oleifera seed and Garcinia mangostana pericarp extracts on Pomacea canaliculata snails, an intermediate host for Angiostrongylus cantonesis. Asia-Pacific Journal of Science and Technology. 2016; 21 (4), https://www.tci-thaijo.org/index.php/APST/index

. J. Mogollón, E. Nieves, M. Rondón, M. Rondón-Rivas. Propiedad molusquicida de Euphorbia laurifolia A. Juss (Euphorbiaceae) contra Biomphalaria glabrata Say hospedador intermediario de Schistosoma mansoni. Avances en Biomedicina. 2016; 5 (2), pp. 83-89, Recuperado de http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=331347417005

. M. Garcés, A. Patiño, M. Gómez, M. Giraldo, W. Bolívar. Sustancias alternativas para el control del caracol africano (Achatina fulica) en el Valle del Cauca, Colombia. Biota Colombiana. 2016; 17 (1), p. 44-52, DOI: 10.21068/C2016v17r01a04

. A. Patiño, A. Giraldo. Valoración de metodología alternativa para el control del caracol gigante africano (Achatina fulica). Boletín Científico. Museo Historia Natural Universidad de Caldas. 2018; 22 (2), pp. 183-192, DOI: https://doi.org/10.17151/bccm.2018.22.2.13

. A. Méndez, L. Castellanos. Eficacia de la tierra de diatomeas contra Helix aspersa Müller en condiciones “in vitro” en Pamplona Norte de Santander. Journal of Negative & No Positive Results. 2019; 2 (12), pp. 659-666, DOI: https://doi.org/10.19230/jonnpr.1698

. A. Méndez, L. Castellanos Effectiveness of diatomaceous earth and lime on arionids and agriolimacids. Ciencia & Tecnología Agropecuaria. 2019; 20 (3), pp. 579-59, DOI: https://doi.org/10.21930/rcta.vol20_num3_art:1587

. L. Castellanos, N. Céspedes, A. Baldovino. Alternativas orgánicas para el logro de producciones más limpias de la fresa en Pamplona, Norte de Santander. INGE CUC. 2020; 16 (1), DOI: https://doi.org/10.17981/ingecuc.16.1.2020.14

. L. Castellanos, E. Rodríguez. Preliminares sobre el uso de cebos con extractos de eucalipto para el control de babosas en fresa, Pamplona, Colombia. Revista Infométrica. 2020; 3 (2), pp. 1-7, http://infometrica.org/index.php/syh/article/view/142

Publicado

2021-10-27

Cómo citar

Quintero Santos, C. D., Castellanos Gonzalez, L., & Becerra-Rozo, W. M. (2021). Possibilities of the Alternative Management of Mollusk Pests in Agricultural Crops. A Review. INGE CUC, 18(1). https://doi.org/10.17981/ingecuc.18.1.2022.01

Número

Sección

Artículos

Dimensions

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